服務介紹：

機體中存在多種抗氧化物，包括抗氧化大分子、抗氧化小分子和酶等，可以清除體內(nèi)產(chǎn)生的各種活性氧，以阻止活性氧誘導的氧化應激(oxidative stress)的產(chǎn)生。一個體系內(nèi)的各種抗氧化大分子、抗氧化小分子和酶的總的水平即體現(xiàn)了該體系內(nèi)的總抗氧化能力。因此測定血漿、血清、尿液、唾液等各種體液，細胞或組織等裂解液中的總抗氧化能力具有非常重要的生物學意義。植物或中草藥抽提液、或各種抗氧化物溶液的總抗氧化能力的檢測可以用于檢測各種溶液的抗氧化能力的強弱，可以用于篩選強抗氧化能力的藥物。

實驗圖：

實驗結果展示：

實驗流程（具體步驟以說明書為準）：

1. 樣品準備

血清、血漿、透明液體狀樣本、動植物組織，細胞等

2. 檢測前準備

處理樣本，配制試劑

3. 檢測步驟

加樣-加試劑-顯色反應后酶標儀讀數(shù)

4. 實驗結果

樣本OD值代入公式計算出結果，以EXCEL形式發(fā)出

送樣運輸要求：

1、動植物組織樣本（干冰運輸）

①動物處死后5min內(nèi)取樣，全程冰上操作，先取易降解的組織，如胰腺、腸、胃等，再取其它組織，組織塊至少取50mg以上（黃豆大?。?。組織取好后用預冷的PBS輕輕漂洗掉樣本表面的血污，例如心、肝、脾、腎等血污較多的組織，可用預冷PBS清洗多次，直至血污清洗干凈，用濾紙吸干組織表面液體，立即放入EP管或凍存管中-80℃保存。

②腸，胃，血管，食管，子宮等標本，取材后立即把組織切開用預冷PBS清洗多次，去除內(nèi)容物，用濾紙吸干組織表面液體，立即放入EP管或凍存管中-80℃保存。

③剛孵化的斑馬魚離心后至少提供黃豆大小的數(shù)量。

④視網(wǎng)膜需單獨剝離，小鼠至少需要4個視網(wǎng)膜合并，大鼠至少需要2個視網(wǎng)膜合并。

⑤皮膚樣本需去凈毛發(fā)。

2、血清樣本（干冰運輸）

全血標本加到促凝管（黃色管蓋）或者無菌無酶的EP管中室溫靜置2小時后于2-8℃ 3000rpm/min離心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。

3、血漿樣本（干冰運輸）

全血樣本置于肝素抗凝管內(nèi)（綠色管蓋），采血量為抗凝管標注體積的80%-100%，血量勿超過抗凝管標注體積否則抗凝效果不佳，血量不少于80%標注體積，否則樣本會被抗凝劑稀釋。輕輕顛倒混勻，30分鐘內(nèi)于2-8℃ 3000rpm/min離心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。

4、細胞樣本（細胞量至少10⁷，細胞沉淀黃豆大小,干冰運輸）

貼壁細胞：①培養(yǎng)好的細胞棄培養(yǎng)基，加入PBS，用細胞刮沿一個方向輕輕刮下細胞，切記不要反復刮，避免細胞刮破。②細胞液收集至離心管內(nèi)，4℃低速離心（不超過3000rpm）5min，去上清，收集細胞沉淀，細胞沉淀要有黃豆大小。

懸浮細胞：①將細胞及培養(yǎng)基一起吸入離心管中，4℃低速離心（不超過3000rpm）5 min，去上清，收集細胞沉淀。②加入1mL PBS溶液重懸細胞，將細胞轉移到1.5mL離心管中，4℃低速離心（不超過3000rpm）5min，去上清，收集細胞沉淀，細胞沉淀要有黃豆大小。

細胞上清：取細胞培養(yǎng)基于2-8℃，3000rpm/min離心15min取上清，于-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。

備注：不要寄送培養(yǎng)板或培養(yǎng)瓶，運輸過程中細胞容易脫落且造成細胞活力下降，培養(yǎng)板有漏液風險，造成樣本污染。

僅供科研用途，不可用于臨床診斷！